混合&走!XJb (DE3)自溶感受细胞
T3051
混合&走!XJb (DE3)自溶感受细胞
猫# | 的名字 | 大小 | 价格 | 数量 |
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T3051 | 混合&走!XJb (DE3)自溶感受质细胞,1ml 500x l -阿拉伯糖 | 10 × 100 μ l | 219.00美元 |
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文档
突出了
- 快速:80 - 90%大肠杆菌在收割后10分钟内即可溶解。
- 高转换效率:达到108- 109每g质粒DNA的转化子。
- DE3溶原性细菌:编码T7聚合酶,在T7启动子控制下表达重组蛋白。
描述
自我分解 | XJb裂解效率比XJa低10- 20%。为了达到最佳的裂解效果,在选择裂解缓冲液时需要更加小心。然而,即使非常低浓度的洗涤剂也可以显著改善裂解。 |
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细胞生长 | 一种非常健壮的菌株,能达到比大肠杆菌K-strains。 |
DNA提取 | XJb不适合DNA提取。 |
DNA的稳定性 | 这个菌株是RecA阳性的。 |
基因型 | F- ompT hsdSB(rB - mB -) gal dcm ΔaraB::λ r, cat (CmR), λ(DE3) |
处理时间 | 10分钟 |
产品存储 | -70°C到-80°C |
蛋白表达 | XJb是重组蛋白表达的理想载体。它缺乏Lon和OmpT蛋白酶,导致更高的蛋白质产量。 |
补充信息 | |
转化效率 | 108- 109每g质粒DNA的转化子 |
Q1:葡萄糖可以添加到培养基中吗?
当葡萄糖被添加到培养基中时,当葡萄糖存在于培养基中时,它会抑制自溶基因的诱导。随着细胞的生长,它们消耗葡萄糖作为碳源。一旦葡萄糖被消耗掉,自溶就开始了。
Q2:在冻融循环过程中甘油是否存在?
不要在含有甘油的缓冲液中进行冻融循环。甘油保护大肠杆菌从形成冰晶开始,冰晶对细胞的裂解至关重要。
Q3:如果裂解液非常粘稠怎么办?
根据所用材料的数量,溶解的材料可能变得粘稠,阻碍了有效的操作。然而,对于大多数应用来说,没有必要使用大量的电池材料。如果有必要,剧烈旋转30秒会在大多数情况下降低粘度。或者,可以使用核酸酶处理(如DNAse I)来降低粘度。用额外的缓冲液稀释细胞裂解液也会减少粘度问题。
Q4:如何提高裂解效率?
如果得到的结果不令人满意,可以通过在更高的温度(25 - 37°C)或在解冻(第5步)后更长时间(10或20分钟)培养细胞来显著改善裂解。
Q5:转换XJb自溶时,热冲击和生长步骤必须执行吗大肠杆菌?
这对于提高转换效率是必要的。然而,如果你的实验不需要很高的转化效率(例如,当使用质粒存量转化大肠杆菌),将DNA和细胞放在冰上孵育1-5分钟,然后直接铺在预热好的盘子上。
Q6:有必要进行发酵剂培养吗?
为了达到最好的效果,细胞在阿拉伯糖诱导前不应该生长活跃。这是通过使用隔夜发酵剂来实现的,其中细胞已经处于固定生长阶段,如协议中所述。如果需要使用较新鲜的发酵剂,应加入已经在发酵剂培养物中的阿拉伯糖。
问7:甲壳素会被降解吗?
非λ溶菌酶通常能降解甲壳素。然而,在这些细胞中表达的λ溶菌酶不能降解甲壳素。λ溶菌酶是一种转糖基化酶。
问8:细胞颗粒应该在什么缓冲液中重悬?
将细胞颗粒重悬于水中,加入或不加入0.01% - 0.1% Triton X-100。对于His-tag的纯化,在His-spin蛋白迷你试剂盒(Zymo研究产品# P2001或P2002)的His-Binding Buffer中重悬。酸性缓冲液和含有较高浓度Mg的缓冲液2 +(>1 mM),以及稳定细胞壁的相关金属,在不同程度上抑制裂解反应。如果可能,在细胞裂解后向缓冲液中加入镁。
问题9:活性细胞是转基因生物吗?
我们所有的活性细胞都被分类为生物安全级别1,并不是转基因生物。只有用质粒转化后,它们才成为转基因生物。
Q10:混合&去菌株dam+和dcm+?
大多数克隆菌株将是dam+/dcm+,除非在基因型中特别注明。
Q11:混合&去菌株DNA甲基化?
是的
问12:哪些菌株相当于Zymo菌株?
DH5α相当于Zymo 5α。DH10B、Top10和One Shot Top10相当于Zymo 10B。对于XL-21 Blue, JM109是最接近的匹配,对于Stbl3, HB101是最接近的匹配。
问13:如何减少琼脂平板上的卫星菌落?
-制备新鲜琼脂平板-在平板中多使用抗生素-在细胞镀液后缩短孵育时间
问题14:是否可以稀释感受态细胞?
我们不建议稀释感受态细胞。我们建议使用更少的DNA来转化细胞,或在转化前用更小的体积对细胞进行混合。如果绝对有必要,应在稀释中使用冷的1X合格缓冲液(Mix & Go转化试剂盒,T3001和T3002)。
问15:哪些抗生素可以用于混合&走!程序吗?
当使用氨苄西林或卡苄西林进行选择时,不需要生长。然而,当使用氯霉素、卡那霉素和四环素时,由于抗生素本身的作用模式,需要一个生长步骤。我们建议对outgrowth步骤执行以下步骤:加入质粒后,将细胞置于冰上孵育5-10分钟。2.增加4卷SOC介质。3.在37°C孵育60分钟,轻轻摇动200-300 rpm。4.涂抹在预热过的含有适当抗生素的培养盘上。
Q16:哪种质粒大小可以用于转化?
Zymo 5α和Zymo 10B高达20kb。然而,转换效率在10-20kb之间成比例下降。在20kb以上,细胞很难转化。JM109, HB101, XJa, XJa (DE3), XJb, XJb (DE3)和TG1可以处理高达10kb的结构。
Q17: DNA转化的推荐浓度和体积是多少?
确实没有建议的最大或最小DNA浓度,但我们用10 pg来进行质量控制。但是,加入的DNA体积不应超过细胞总体积的5%;当使用的DNA体积增加时,效率会下降几倍。如果DNA样本太稀释,使用我们的DNA清洁和浓缩器。
Q18:提高转化效率有什么建议吗?
1.解冻细胞在冰上,而不是室温。2.在冰上培养细胞和DNA混合物,而不是室温。但是,孵育时间不要超过1小时。3.确保细胞在接收时仍处于冷冻状态。4.在37°C预热培养板至少30分钟。5. Prepare fresh LB agar plates containing the appropriate antibiotic. 6. Prepare a new DNA sample. 7. Store the cells at -80°C (not 4°C or -20°C). If the freezer breaks, the cells should be OK as long as the temp does not go higher than -50°C. 8. Avoid freeze/thaw cycles.
Q19:热冲击会如何影响我的转换效率?
热休克不是必要的,但是在准备库或转化XJb自溶时,热休克有时是有益的大肠杆菌菌株。我们推荐以下方案为热休克与生长:加入质粒后,将细胞置于冰上孵育5-10分钟。2.42°C孵育细胞45秒。3.向细胞中加入450毫升的SOC。4.在37°C孵育60分钟,轻轻摇动200-300 rpm。5. Spread on a pre-warmed culture plate containing the appropriate antibiotic.
为了从美杜莎中克隆新的gfp样荧光蛋白,作者利用表达文库识别了潜在的基因,并将基因克隆到载体中。利用Zymo Research公司的XJb自溶大肠杆菌细胞促进蛋白的表达。作者从美杜莎身上纯化出了三种发出三种不同颜色荧光的蛋白质:青色、绿色和黄色。
杨晓东,张晓东,张晓东,等(2011)水medusa Obelia sp.绿色荧光蛋白的多色同源物。光化学与生物学报(8):1303-9。